내이의 내림프와 외림프는 서로 반대되는 이온 조성을 가지고 있으며, 각기 독특한 전기 전위를 가지고 있다. 이러한 내이의 독특한 이온 조성 및 전기 전위의 유지는 정상 내이 기능에 매우 중요하다. 이에 저자들은 흰쥐 내이에서 Gooding과 Stewart 용액을 이용하여 측두골 탈회 후 Na/K-ATPase subunit 아형들의 분포를 면역조직화학 염색을 통해 관찰하였다. 와우에서 Na/K-ATPase α1β1 동위효소는 선조하 섬유세포 (infrastrial fibrocyte), 선조상 섬유세포 (suprastrial fibrocyte), 나선융기 (spiral prominence), 외측구세포 (outer sulcus cell) 및 나선신경절 (spiral ganglion)에서 풍부하게 발현되었고, 와우신경(cochlear nerve)과 청치간세포 (interdental cell)에서도 약간 발현되었다. α1β2 동위효소는 혈관조의 전층에서 풍부하게 발현되었고, α3β1 동위효소는 와우신경과 나선신경절에서 발현되었다. α3β2 동위효소는 나선신경절에서 발현되었다. 그러나 α2β1와 α2β2 동위효소는 발현되지 않았다. 전정에서 Na/K-ATPase α1β1 동위효소는 구형낭반 유모세포 (macula sacculi hair cell), 팽대부 이행세포 (transitional cell) 및 전정신경절 (vestibular ganglion)에서 발현되었고, α1β2 동위효소는 팽대부 암세포 (dark cell)와 이행세포 및 전정신경절에서 풍부하게 발현되었다. α3β1 동위효소는 팽대부릉 (crista ampularis hair cell), 난형낭반 (macula utriculi hair cell) 및 구형낭반 유모세포들에서 풍부하게 발현되었으며, 팽대부신경 (ampullary nerve), 난형낭신경 (utriular nerve), 구형낭신경 (saccular nerve) 및 전정신경절에서는 중등도로 발현되었다. α3β2 동위효소는 팽대부신경, 난형낭신경, 구형낭신경 및 전정신경절에서 발현되었다. 그외 α2β1과 α2β2 동위효소들은 발현되지 않았다. 이상의 결과는 흰쥐 내이에 4개 이상의 Na/K-ATPase 동위효소가 존재함을암시하며, 이와 같은 구조적 다양성은 내이의 부위에 따른 물질수송과 조절의 차이를 설명해 줄 수 있을 것으로 생각된다.
The endolymph and perilymph of the inner ear have unique ionic composition and electrical potential. It is widely accepted that normal auditory function depends on them and Na/K-ATPase plays a central role in production and maintenance of them. The distribution of five Na/K-ATPase subunit isoform (α1, α2, α3, β1, and β2) in rat inner ear was determined by immunohistochemistry after decalcifying the temporal bone with Gooding and Stewart’s solution. In the cochlear regions, Na/K-ATPase α1β1 isozyme was abundantly expressed in the infrastrial fibrocytes, suprastrial fibrocytes, spiral prominence, outer sulcus cells and spiral ganglion, and also detected in cochlear nerve and interdental cells. α1β2 isozyme was abundantly expressed in all layers of stria vascularis and α3β1 isozyme was detected in cochlear nerve and spiral ganglion. α3β2 isozyme was expressed in spiral ganglion. In vestibular regions, Na/KATPase α1β1 isozyme was expressed in macular sacculi hair cell, transitional cells of ampulla, and vestibular ganglion, and α1β2 isozyme was abundantly expressed in ampullary dark cells and transitional cells and vestibular ganglion. α3β1 isozyme was abundantly expressed in crista ampularis, macula utriculi, and macula sacculi hair cells, and also moderately detected in ampullary, utricular, and saccular nerves, and vestibular ganglion. α3β2 isozyme also detected in ampullary, utricular, and saccular nerves, and vestibular ganglion. But, α2β1 and α2β2 isozymes were not detected in any regions of inner ear. These findings suggest the possibility of four unique Na/K-ATPase isozymes deferentially expressed among the various cell types of the inner ear. This structural diversity imparts considerable biological versatility to the Na/KATPase and would be provided the explanations for the differences in fluid and ion transport and its regulation among the inner ear regions.
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